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Western Blot (WB) SOP
150 mM 氯化钠
1.0% NP-40(或0.1% Triton X - 100)
50 mM Tris-HCl,pH 8.0
蛋白酶抑制剂
150 mM 氯化钠
1% IGEPALCA - 630
0.5% 脱氧胆酸钠
0.1% SDS(十二烷基硫酸钠)
50 mM Tris-HCl,pH8.0
蛋白酶抑制剂
20 mM Tris-HCl
蛋白酶抑制剂
4% SDS
10% 2-巯基乙醇
20% 甘油
0.004% 溴酚蓝
0.125M Tris-HCl
测定pH值并将pH值调整至6.8
电泳缓冲液(Tris-Glycine/SDS)
25 mM Tris base(三羟甲基氨基甲烷游离碱)
190 mM 甘氨酸
0.1% SDS
测定pH值并将pH值调整至8.3
25 mM Tris base(三羟甲基氨基甲烷游离碱)
190 mM 甘氨酸
20% 甲醇
测定pH值并将pH值调整至8.3
对于大于80kDa的蛋白,建议SDS终浓度为0.1%。
48 mM Tris base
39 mM 甘氨酸
20% 甲醇
0.04% SDS
1 3% 牛奶或BSA(牛血清白蛋白)
加入TBST缓冲液。充分混合后过滤。不过滤可能会有斑点沉积,这种小暗点会在显色时影响实验结果。
1. 将细胞培养皿放置冰上并用冰冷的PBS洗涤细胞。
2. 吸出PBS,然后加入冰冷的裂解缓冲液(每107个细胞/100 mm培养皿/150 cm2烧瓶加1mL;每5x106个细胞/60 mm培养皿/75 cm2烧瓶加0.5 mL)。
3. 用预冷的塑料细胞刮刀将贴壁细胞从培养皿上刮下,然后轻轻将细胞悬液转移到预冷的小离心管中。或者,用胰蛋白酶消化细胞并用PBS洗涤细胞,然后将细胞重悬浮于小离心管内的裂解缓冲液中。
4. 4℃下持续振摇30分钟。
5. 放入微型离心机,在4°C下离心。您可能需要根据细胞类型改变离心力和离心时间;指南给出的参考标准是在12,000 rpm转速下离心20分钟,但须根据您的实验确定(白细胞所需的离心力很小)。
6. 轻轻地从离心机中取出离心管放置在冰上。将上清液吸出转移到放置在冰上预冷的新管中,弃去沉淀。
1. 用干净器械解剖目标组织,最好在冰上,并且越快越好以防蛋白酶降解。
2. 将组织放入圆底离心管或EP管中,浸入液氮中“速冻”。样本在-80°C储存备用,或放在冰上立即匀浆。对于一块约5mg的组织,向管中迅速加入约300 μL裂解液,并用电动匀浆器匀浆,2X裂解液冲洗刀片两次,每次200 μL,然后在4℃下(例如将回旋振荡器放入冰箱)持续振摇2小时。裂解液的体积必须根据组织总量决定;蛋白提取物不宜过稀释,以免造成蛋白损失,并尽量减少样本体积,以便凝胶上样。最小浓度为0.1 mg/mL,最佳浓度为1-5 mg/mL。
3. 在微型离心机中4℃下按照12,000rpm的转速离心20分钟。轻轻地从离心机中取出离心管放置在冰上。将上清液吸出转移到放置在冰上预冷的新管中,弃去沉淀。
1. 取少量裂解液,用于蛋白质定量分析。测定每种细胞裂解液的蛋白质浓度。
2. 确定蛋白质的上样量,并添加等体积的2X稀释Laemmli样本缓冲液。
3. 对样本进行还原和变性时,将样本缓冲液中的细胞裂解液在100°C下煮沸5分钟。裂解液可等量分装并在-20°C下储存备用。
将等量的蛋白和分子量标志物上样至SDS-PAGE凝胶孔中。细胞裂解液或组织匀浆的总蛋白上样量为20-30μg,纯化蛋白的上样量为10-100ng。
在100V下跑胶1-2小时。距底部1/4处
膜可以是硝酸纤维素,也可以是PVDF。用甲醇活化PVDF1分钟,并在制备转膜层之前用转膜缓冲液冲洗PVDF。转膜时间和电压根据指标大小优化。
转膜层的制备如下:
用封闭缓冲液在室温下封闭膜1-2小时或在4°C下封闭过夜。
用适当稀释的一抗在封闭缓冲液中孵育膜。我们建议在4°C下过夜孵育;其他条件可以优化。
用TBST洗涤膜3次,每次5分钟。
用推荐稀释度的偶联二抗在封闭缓冲液中室温孵育膜1小时。
用TBST洗涤膜3次,每次5分钟。
ECLReagent根据试剂商提供产品说明书使用
利用暗室显影技术采集化学发光图像,或利用常规图像扫描法采集比色检测图像。
8. 凝胶百分比取决于目标蛋白的大小:
蛋白大小 | 凝胶百分比 |
4–40kDa | 20% |
12–45kDa | 15% |
10-70kDa | 12.5% |
15-100kDa | 10% |
25-100kDa | 8% |
Prev:No